Новые данные об инфицированности Haemaphysalis concinna возбудителями клещевых инфекций человека и животных на территории Прибайкалья

Обоснование. Haemaphysalis concinna привлекает к себе большое внимание в связи с расширением ареала и возрастающей ролью в передаче человеку и животным заболеваний различной этиологии. На территории Прибайкалья изучение инфицированности H. concinna почти не проводилось, несмотря на способность этих клещей переносить возбудителей, патогенных для человека.
Цель исследования. Изучение инфицированности Haemaphysalis concinna возбудителями клещевых инфекций человека и животных на территории Прибайкалья.
Материалы и методы. Из природных стаций Прибайкалья было исследовано ПЦР методом 998 экземпляров клещей H. concinna на наличие маркеров различных патогенов вирусной, бактериальной и протозойной природы.
Результаты. В клещах H. concinna нами выявлены маркеры следующих патогенов: РНК ВКЭ (0,6 %), вируса Кемерово (1,1 %), ДНК Borrelia burgdorferi s.l. (1,3 %), B. miyamotoi (0,5 %), ДНК представителей семейства Anaplasmataceae (E. muris и A. phagocytophilum) (3,7 %), риккетсий (R. sibirica (1,6 %), R. raoultii (2,8 %)), «Candidatus R. tarasevichiae» (32,6 %) а также простейших (Babesia spp.) (3,5 %). Определенная в ходе исследования нуклеотидная последовательность groESL оперона длиной 1315 н.о. образца ДНК Ehrlichia spp. от клеща H. concinna оказалась идентичной нуклеотидным последовательностям образцов E. muris. На основании анализа последовательностей гена 18S рРНК в образцах клещей H. concinna, нами выявлены бабезии генетически близкие к пироплазмидам мелких жвачных – B. crassa и B. motasi. Впервые обнаружен образец ДНК Babesia sp., нуклеотидные последовательности которого идентичны последовательностям образца Kh-Hc222 (KJ486568), обнаруженного в Хабаровском крае.
Заключение. Полученные нами данные свидетельствуют о необходимости организации постоянного мониторинга за местообитаниями клещей H. concinna на территории Прибайкалья и изучении его инфицированности как известными, так и новыми, недавно выявленными трансмиссивными клещевыми патогенами.

1. Rubel F, Brugger K, Walter M, Vogelgesang JR, Didyk YM, Fu S, et al. Geographical distribution, climate adaptation and vector competence of the Eurasian hard tick Haemaphysalis concinna. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(5): 1080-1089. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.04.002

2. Liu J, Han XY, Ye RZ, Xu Q, Wang XY, Li ZH, et al. An integrated data analysis reveals distribution, hosts, and pathogen diversity of Haemaphysalis concinna. Parasit Vectors. 2024; 17(1): 92. doi: 10.1186/s13071-024-06152-5

3. Zhao GP, Wang YX, Fan ZW, Ji Y, Liu MJ, Zhang WH, et al. Mapping ticks and tick-borne pathogens in China. Nat Commun. 2021; 12(1): 1075. doi: 10.1038/s41467-021-21375-1

4. Kholodilov IS, Belova OA, Morozkin ES, Litov AG, Ivannikova AY, Makenov MT, et al. Geographical and tickdependent distribution of FlaviLike Alongshan and Yanggou tick viruses in Russia. Viruses. 2021; 13: 458. doi: 10.3390/v13030458

5. Cai X, Cai X, Xu Y, Shao Y, Fu L, Men X, et al. Virome analysis of ticks and tick-borne viruses in Heilongjiang and Jilin Provinces, China. Virus Res. 2023; 323: 199006. doi: 10.1016/j.virusres.2022.199006

6. Li D, Li J, Wang R, Zhang W, Nie K, Yin Q, et al. Detection and Genetic Analysis of Songling Virus in Haemaphysalis concinna near the China-North Korea Border. Zoonoses. 2024; 4(1). doi: 10.15212/ZOONOSES-2024-0004

7. Wu Y, Zhou Q, Mao M, Chen H, Qi R. Diversity of species and geographic distribution of tick-borne viruses in China. Front Microbiol. 2024; 15: 1309698. doi: 10.3389/fmicb.2024.1309698

8. Viana DS, Santamaría L, Figuerola J. Migratory birds as global dispersal vectors. Trends Ecol. Evol. 2016; 31: 763–75. doi: 10.1016/j.tree.2016.07.005

9. Flaisz B, Sulyok KM, Kováts D, Kontschán J, Csörgő T, Csipak Á, et al. Babesia genotypes in Haemaphysalis concinna collected from birds in Hungary refectphylogeographic connections with Siberia and the Far East. Ticks Tick Borne Dis. 2017; 8: 666-70. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.04.013

10. Keve G, Sándor AD, Hornok S. Hard ticks (Acari: Ixodidae) associated with birds in Europe: review of literature data. Front. Vet. Sci. 2022; 9: 928756. doi: 10.3389/fvets.2022.928756

11. Дорощенко Е.К., Лисак О.В., Сунцова О.В., Савинова Ю.С., Козлова И.В. Данные о распространении клеща Haemaphysalis concinna на территории Иркутской области и Республики Бурятия. Acta Biomedica Scientifica. 2023; 8(4): 80-91. doi: 10.29413/ABS.2023-8.4.9

12. Данчинова Г.А., Хаснатинов М.А., Шулунов С.С., Арбатская Е.В., Бадуева Л.Б., Сунцова О.В., и др. Фауна и экология популяций иксодовых клещей переносчиков клещевых инфекций в Прибайкалье. Acta Biomedica Scientifica. 2007; 3S(55): 86-89.

13. Вершинин Е.А., Мельникова О.В., Морозов И.М. Клещи рода Haemaphysalis в южной части Прибайкалья. Известия ИГУ. Серия «Биология. Экология». 2014; 8: 92–95.

14. Tkachev SE, Demina TV, Dzhioev YP, Kozlova IV, Verkhozina MM, Doroshchenko EK, et al. Genetic studies of tick-borne encephalitis virus strains from Western and Eastern Siberia. In: Růžek D, et al., editors. Flavivirus encephalitis. Croatia: In Tech. 2011; 235–254. doi: 10.5772/25024

15. Tkachev SE, Tikunov AY, Babkin IV, Livanova NN, Livanov SG, Panov VV, et al. Occurrence and genetic variability of Kemerovo virus in Ixodes ticks from different regions of Western Siberia, Russia and Kazakhstan. Infect Genet Evol. 2017; 47: 56–63. doi: 10.1016/j.meegid.2016.11.007

16. Rar V, Livanova N, Tkachev S, Kaverina G, Tikunov A, Sabitova Y, et al. Detection and genetic characterization of a wide range of infectious agents in Ixodes pavlovskyi ticks in Western Siberia, Russia. Parasit Vectors. 2017; 10(1): 258. doi: 10.1186/s13071-017-2186-5

17. Igolkina Y, Rar V, Vysochina N, Ivanov L, Tikunov A, Pukhovskaya N, et al. Genetic variability of Rickettsia spp. in Dermacentor and Haemaphysalis ticks from the Russian Far East. Ticks and Tick-borne Diseases. 2018; 9(6): 1594-1603. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.07.015

18. ITOL. URL: https://itol.embl.de/ [date of access: May 21, 2025].

19. Яковчиц Н.В., Бондаренко Е.И., Адельшин Р.В., Мельникова О.В., Вершинин Е.А., Морозов И.М., и др. Выявление ДНК возбудителей клещевого риккетсиоза в клещах на территории Иркутской области. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2015; 6(85): 43-46. doi: 10.31631/2073-3046-2015-14-6-43-46

20. Rar VA, Epikhina TI, Suntsova OV, Kozlova IV, Lisak OV, Pukhovskaya NM, et al. Genetic variability of Babesia parasites in Haemaphysalis spp. and Ixode spersulcatus ticks in the Baikal region and Far East of Russia. Infect Genet Evol. 2014; 28: 270-5. doi: 10.1016/j.meegid.2014.10.010

21. Ляпунов А.В., Хаснатинов М.А., Данчинова Г.А., Чапоргина Е.А., Арбатская Е.В., Шулунов С.С., и др. Эпидемиологическая роль клещей родов Dermacentor и Haemaphysalis в Предбайкалье. Известия ИГУ. Серия «Биология. Экология». 2011; 4(4): 63-69.

22. Riedl H, Kozuch O, Sixl W, Schmeller E, Nosek J. Isolation of the tick-borne encephalitis virus (TBE-virus) from the tick Haemaphysalis concinna Koch. Arch HygBakteriol. 1971; 154(6): 610-611.

23. Kozuch O, Nosek J. Experimental transmission of tick-borne encephalitis (TBE) virus by Haemaphysalis concinna ticks. Acta Virol. 1980; 24(5): 377.

24. Верхозина М.М., Злобин В.И., Козлова И.В., Дорощенко Е.К., Лисак О.В., Демина Т.В., и др. Молекулярная эпидемиология и экология вируса клещевого энцефалита в Восточной Сибири: Монография. Новосибирск: Изд.АНС «СибАк». 2017; 298.

25. Мельникова О.В. Динамика паразитарной системы клещевого энцефалита в Прибайкалье и ее влияние на заболеваемость населения: дис. …докт. биол. наук: 03.02.08 ИГУ, Иркутск, 1018-302 с.

26. Chumakov MP. Report on the isolation from Ixodes persulcatus ticks and from patients in western Siberia of a virus differing from the agent of tick-borne encephalitis. Acta Virol. 1963; 7: 82-83.

27. Dedkov VG, Markelov ML, Gridneva KA, Bekova MV, Gmyl AP, Kozlovskaya LI, et al. Prevalence of Kemerovo virus in ixodid ticks from the Russian Federation. Ticks Tick Borne Dis. 2014; 5(6): 651-655. doi: 10.1016/j.ttbdis.2014.04.017

28. Tkachev S, Panov V, Dobler G, Tikunova N. First detection of Kemerovo virus in Ixodes pavlovskyi and Ixode spersulcatus ticks collected in Novosibirsk region, Russia. Ticks and Tick-borne Diseases.2014; 5(5): 494-496. doi: 10.1016/j.ttbdis.2014.03.003

29. Safonova MV, Gmyl AP, Karganova GG, Lukashev AN, Speranskaya AS, Neverov AD, et al. Genetic diversity of Kemerovo virus and phylogenetic relationships within the Great Island virus genetic group. Ticks and Tickborne diseases. 2020; 11(2): 101333. doi: 10.1016/j.ttbdis.2019.101333

30. Zhang XA, Ma YD, Zhang YF, Hu ZY, Zhang JT, Han S, et al. A New Orthonairovirus associated with human febrile illness. N Engl J Med. 2024; 391(9): 821-831. doi: 10.1056/NEJMoa2313722

31. Карташов М.Ю., Кривошеина Е.И., Курушина В.Ю., Мошкин А.Б., Ханхареев С.С., Бичеоол Ч.Р., и др. Встречаемость и генетическое разнообразие вируса Алонгшан (Flaviviridae), выявленного в клещах на юге Восточной Сибири. Вопросы вирусологии. 2024; 69(2): 151–161. doi: 10.36233/0507-4088-223

32. Дорощенко Е.К., Лисак О.В., Рар В.А., Сунцова О.В., Савинова Ю.С., Козлова И.В. Видовое и генетическое разнообразие представителей семейства Anaplasmataceae, выявленное в зоне симпатрии клещей родов Ixodes, Dermacentor, Haemaphysalis. Acta Biomedica Scientifica. 2019; 4(2): 127-135. doi: 10.29413/ABS.2019-4.2.18

33. Hamšíková Z, Kazimírová M, Haruštiaková D, Mahríková L, Slovák M, Berthová L, et al. Babesia spp. in ticks and wildlife in different habitat types of Slovakia. Parasit Vectors. 2016; 9(1): 292. doi: 10.1186/s13071-016-1560-z

34. Flaisz B, Sulyok KM, Kováts D, Kontschán J, Csörgő T, Csipak Á, et al. Babesia genotypes in Haemaphysalis concinna collected from birds in Hungary reflect phylogeographic connections with Siberia and the Far East. Ticks Tick Borne Dis. 2017; 8(4): 666-670. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.04.013