Результаты изучения иммуногенной активности клеточных оболочек Francisella tularensis разных подвидов (сообщение 2)

Изучено влияние препаратов клеточных оболочек Francisella tularensis четырех подвидов, полученных из мочевинных лизатов туляремийного микроба, на продукцию цитокинов иммунокомпетентными клетками экспериментальных животных. Показано стимулирующее влияние препаратов клеточных оболочек F tularensis на синтез цитокинов. Результаты исследований позволяют рассматривать препараты клеточных оболочек F. tularensis в качестве компонентов при создании субъединичных вакцин.

туляремия, клеточные оболочки, цитокины, иммунокомпетентные клетки, вакцины

1. Дубровина В.И. Функциональные особенности фагоцитов при инфекционном и вакцинальном процессе, вызываемом Francisella tularensis. - Иркутск, 2002. - 119 с

2. Корнева А.В., Николаев В.Б., Ястремская К.Ю., Марков Е.Ю., Войткова В.В., Соловьев С.Ю., Попова Ю.О., Мазепа А.В., Половинкина В.С. Результаты изучения иммуногенной активности клеточных оболочек Francisella tularensis разных подвидов // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. - 2014. - № 4 (77). - C. 73-77

3. Марков Е.Ю., Николаев В.Б., Загоскина Т.Ю., Половинкина В.С., Иванова Т.А., Саппо С.Г., Андреевская Н.М., Михайлова В.А., Голубинский Е.П. Протективная активность субклеточных фракций Yersinia pestis при экспериментальной чуме у белых мышей // Бюлл. ВСНЦ СО РАМН. - 2004. - № 3 (64). - С. 123-127

4. Онищенко Г.Г., Сандахчиев Л.С., Нетесов С.В., Мартынюк РА. Биотерроризм: национальная и глобальная угроза // Вестник РАН. - 2003. - № 3 (73). - С. 195-204

5. Хансон Р., Филлипс Дж. Химический состав бактериальной клетки. Методы общей бактериологии. - Москва: Мир, 1984. - С. 283-373

6. Cebon J., Layton J.E., Maher D., Morstyn G. (1994). Endogenous haematopoietic growth factors in neutropenia and infection. Br. J. Haematol., 86, 265-274.

7. Fortier A.H., Green S.J., Polsinelli T., Jones T.R., Crawford R.M., Leiby D.A., Elkins K.L., Meltzer M.S., Nacy C.A. (1994). Life and death of an intracellular pathogen: Francisella tularensis and the macrophage. Immunol. Ser., 60, 349-361.

8. Huntley J.F., Conley P.G., Rasko D.A., Hagman K.E., Apicella M.A., Norgard M.V. (2008). Native outer membrane proteins protect mice against pulmonary challenge with virulent type A Francisella tularensis. Infect. Immun., 76, 3664-3671.

9. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. (1951). Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 193 (1), 265-275.

10. Mohapatra N.P., Soni S., Murugesan R., Dang M., Reilly T.J., Elbenna J., Schlesinger L.S., Gunn J.S. (2010). Francisella acid phosphatases inactivate NADPH oxidase complex components in human phagocytes by dephosphorylation. J. Immun., 184 (9), 5141.

11. Oyston PCF (2008). Francisella tularensis: unravelling the secrets of an intracellular pathogen. J. Med. Microbiol., 57 (8), 921-930.

12. Peterson G.L. (1977). A simplification of the protein assay method of Lowry et al. which is more generally applicable. Anal. Biochem., 83 (2), 346-356.

13. Root R.K., Dale D.C. (1999). Granulocyte colony-stimulating factor and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor: comparisons and potential for use in the treatment of infections in nonneutropenic patients. J. Infect. Dis., 179, 342-352.

14. Zaman Z., Verwilghem R.L. (1979). Quantitation of proteins solubilized in sodium dodecyl sulfate-mercaptoethanol-tris electrophoresis buffer. Anal. Biochem., 100 (1), 64-69.