Иксодовые клещи как переносчики возбудителей бабезиозов человека и животных в Прибайкалье

Обоснование. Пироплазмозы (бабезиозы и  тейлериозы) – это  группа природно-очаговых инфекционных заболеваний человека и  животных, вызываемых внутриэритроцитарными паразитами, которые передаются преимущественно иксодовыми клещами. В  Прибайкалье, несмотря на широкое распространение очагов бабезиоза и тейлериоза, информация о переносчиках этих заболеваний фрагментарна.

Цель исследования. Выявление переносчиков возбудителей бабезиоза человека и животных, изучение тропизма различных видов бабезий к иксодовым клещам, распространённым в Прибайкалье.

Материалы и методы. На наличие ДНК Babesia spp./Theileria spp. исследовано 3239 экземпляров I. persulcatus, 1795 экземпляров D. nuttalli и 729 экземпляров H. сoncinna, собранных в природных стациях Прибайкалья из 19 районов Иркутской области и 6 районов Республики Бурятия, а также 5 экземпляров D. nuttalli, снятых с лошадей. Для детекции и типирования бабезий и тейлерий использована гнездовая двухраундовая полимеразная цепная реакция с родо- и видоспецифичными праймерами из области гена 18S рРНК. Для изучения генетического разнообразия выявленных возбудителей проводилось выборочное секвенирование образцов.

Результаты. ДНК Babesia  spp. выявлена в  трёх видах иксодовых клещей на  территории Иркутской области и  в  одном – в  Республике Бурятия. В клещах I. persulcatus обнаружены: B. microti «US»-type, B. venatorum, B. crassalike и  уникальная Babesia  sp. Irk-Ip655. В  клещах H.  concinna выявлена ДНК B. crassa-like, B. motasi-like и Babesia spp. В клещах D. nuttalli обнаружена ДНК Babesia spp. и T. equi.

Заключение. На территории Прибайкалья выявлены переносчики возбудителей бабезиоза как человека, так и животных. Установлен тропизм B. microti «US»-type и B. venatorum в отношении клещей I. persulcatus. Выявление специфических связей между другими видами бабезий и тейлерий и клещамипереносчиками на территории Прибайкалья будет продолжено.

1. Vannier EG, Diuk-Wasser MA, Ben Mamoun C, Krause PJ. Babesiosis. Infect Dis Clin North Am. 2015; 29: 357-370. doi: 10.1016/j.idc.2015.02.008

2. Onyiche TE, Răileanu C, Fischer S, Silaghi C. Global distribution of Babesia species in questing ticks: A systematic review and meta-analysis based on published literature. Pathogens. 2021; 10: 230. doi: 10.3390/pathogens10020230

3. Hildebrandt A, Zintl A, Montero E, Hunfeld KP, Gray J. Human babesiosis in Europe. Pathogens. 2021; 10: 1165. doi: 10.3390/pathogens10091165

4. Birkenheuer AJ, Buch J, Beall MJ, Braff J, Chandrashekar R. Global distribution of canine Babesia species identified by a commercial diagnostic laboratory. Vet Parasitol Reg Stud Rep. 2020; 22: 100471. doi: 10.1016/j.vprsr.2020.100471

5. Penzhorn BL. Don’t let sleeping dogs lie: Unravelling the identity and taxonomy of Babesia canis, Babesia rossi and Babesia vogeli. Parasit Vectors. 2020; 13: 184. doi: 10.1186/s13071-020-04062-w

6. Всемирная организация по охране здоровья животных (МЭБ). URL: https://www.oie.int [date of access: 10.10.2024].

7. Eshoo MW, Crowder CD, Carolan HE, Rounds MA, Ecker DJ, Haag H, et al. Broad-range survey of tick-borne pathogens in Southern Germany reveals a high prevalence of Babesia microti and a diversity of other tick-borne pathogens. Vector Borne Zoonotic Dis. 2014; 14: 584. doi: 10.1089/vbz.2013.1498

8. Moniuszko-Malinowska A, Swiecicka I, Dunaj J, Zajkowska J, Czupryna P, Zambrowski G, et al. Infection with Babesia microti in humans with non-specific symptoms in North East Poland. Infect Dis (Lond). 2016; 48: 537-543. doi: 10.3109/23744235.2016.1164339

9. Beattie JF, Michelson ML, Holman PJ. Acute babesiosis caused by Babesia divergens in a resident of Kentucky. N Engl J Med. 2002; 3(47): 697-698. doi: 10.1056/NEJM200208293470921

10. Hong SH, Kim SY, Song BG, Rho JR, Cho CR, Kim CN, et al. Detection and characterization of an emerging type of Babesia sp. similar to Babesia motasi for the first case of human babesiosis and ticks in Korea. Emerg Microbes Infect. 2019; 8: 869-878. doi: 10 .1080/22221751.2019.1622997

11. Wilhelmsson P, Lövmar M, Krogfelt KA, Nielsen HV, Forsberg P, Lindgren PE. Clinical/serological outcome in humans bitten by Babesia species positive Ixodes ricinus ticks in Sweden and on the Åland Islands. Ticks Tick Borne Dis. 2020; 11: 101455. doi: 10.1016/j.ttbdis.2020.101455

12. Doderer-Lang C, Filisetti D, Badin J, Delale C, Clavier V, Brunet J, et al. Babesia crassa-like human infection indicating need for adapted PCR diagnosis of babesiosis, France. Emerg Infect Dis. 2022; (2): 449-452. doi: 10.3201/eid2802.211596

13. Kumar A, O’Bryan J, Krause PJ. The global emergence of human babesiosis. Pathogens. 2021; 10: 1447. doi: 10.3390/pathogens10111447

14. Рар В.А., Марченко В.А., Ефремова Е.А., Сунцова О.В., Лисак О.В., Тикунов А.Ю., и др. Идентификация и генетическая характеризация этиологического агента пироплазмидоза лошадей на территории Западной и Восточной Сибири. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018; 22(2): 224-229. doi: 10.18699/VJ18.351

15. Рар В.А., Епихина Т.И., Ефремова Е.А., Марченко В.А., Сунцова О.В., Лисак О.В., и др. Молекулярно-генетический анализ возбудителей анаплазмозов сельскохозяйственных животных на территории Западной и Восточной Сибири. Acta biomedica scientifica. 2015; 105(5): 83-87.

16. Standard Nucleotide BLAST. URL: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST [date of access: 10.10.2024].

17. MEGA 7.0. URL: http://www.megasoftware.net/manual.html [date of access: 10.10.2024].

18. Rar VA, Epikhina TI, Tikunova NV, Suntsova OV, Kozlova IV, Lisak OV, et al. Genetic variabilis of Babesia parasites in Haemaphysalis spp. and Ixodes persulcatus in the Baikal region and Far East of Russia. Infection, Genetics and Evolution. 2014; 28: 270-275. doi: 10.1016/j.meegid.2014.10.010

19. Schnittger L, Yin H, Gubbels MJ, Beyer D, Niemann S, Jongejan F, et al. Phylogeny of sheep and goat Theileria and Babesia parasites. Parasitol Res. 2003; 91: 398-406. doi: 10.1007/s00436-003-0979-2

20. Gou H, Guan G, Ma M, Liu A, Liu Z, Ren Q, et al. Phylogenetic analysis based on 28S rRNA of Babesia spp. In ruminants in China. Exp Appl Acarol. 2013; 59: 463-472. doi: 10.3347/kjp.2013.51.5.511

21. Jia N, Zheng YC, Jiang JF, Jiang RR, Jiang BG, Wei R, et al. Human babesiosis caused by a Babesia crassa-like pathogen: A case series. Clin Infect Dis. 2018; 67: 1110-1119. doi: 10.1093/cid/ciy212

22. Сунцова О.В., Рар В.А., Лисак О.В., Мельцов И.В., Дорощенко Е.К., Савинова Ю.С., и др. Эпизоотическая ситуация в отношении гемопаразитарных заболеваний сельскохозяйственных животных в Иркутской области. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture. 2023; 15(4): 210-235. doi: 10.12731/2658-6649-2023-15-4-210-235

23. Tirosh-Levy S, Gottlieb Y, Fry LM, Knowles DP, Steinman A. Тwenty years of equine piroplasmosis research: Global distribution, molecular diagnosis, and phylogeny. Pathogens. 2020; 8(9-11): 926. doi: 10.3390/pathogens9110926

24. Rar V, Marchenko V, Suntsova O, Epikhina T, Tikunov A, Meltsov I, et al. The first study of the prevalence and genetic diversity of Theileria equi and Babesia caballi in horses in Russia. Parasitol Res.2024; 123: 279. doi: 10.1007/s00436-024-08300-3

25. Bajer A, Dwużnik-Szarek D. The specificity of Babesia tick vector interactions: Recent advances and pitfalls in molecular and field studies. Parasit Vectors. 2021; 14-1: 507. doi: 10.1186/s13071-021-05019-3