Preview

Acta Biomedica Scientifica

Расширенный поиск

Клиренс карбонил-мофици-рованных липопротеидов из кровотока кроликов

https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142

Полный текст:

Аннотация

Исследовали клиренс альдегид-модифицированных липопротеидов низкой плотности (ЛНП) у кроликов с использованием изолированных при помощи препаративного ультрацентрифугирования биотинилированных ЛНП кроликов и ФИТЦ-меченых ЛНП человека. Глиоксаль- и метилглиоксаль-модифицированные ЛНП кроликов и человека циркулируют в кровотоке такое же время, что и нативные ЛНП. МДА-модифицированные ЛНП быстро элиминируются из кровотока. Вероятно, глиоксаль- и метилглиоксаль-модифицированные ЛНП более атерогенны, в то время как МДА-модифицированные ЛНП могут подвергаться усиленной утилизации.

Об авторах

М. А. Гречникова
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава РФ
Россия


С. П. Домогатский
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава РФ
Россия


Г. Г. Коновалова
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия


А. К. Тихазе
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия


В. З. Ланкин
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия


Список литературы

1. Ланкин В.З., Тихазе А.К., Капелько В.И., Шепелькова Г.С., Шумаев К.Б., Панасенко О.М., Коновалова Г.Г., Беленков Ю.Н. Механизмы окислительной модификации липопротеидов низкой плотности при окислительном и карбонильном стрессе // Биохимия. - 2007. - Т. 72, № 10. - С. 1330-1341

2. Bayer EA, Wilchek M (1990). Protein biotinylation. Meth. Enzymol., (184), 138-160.

3. Cartun RW, Pedersen CA (1989). An immunocytochemical technique offering increased sensitivity and lowered cost with a streptavidin-horseradish peroxidase conjugate. J. Histotechnol., 12 (4), 273-277.

4. Goldstein JL, Brown MS (2009). History of discovery: the LDL receptor. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 29 (4), 431-438.

5. Gylling H, Kontula K, Miettinen TA (1995). Cholesterol absorption and metabolism and LDL kinetics in healthy men with different apoprotein E phenotypes and apoprotein B Xba I and LDL receptor Pvu II genotypes. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., (15), 208-213.

6. Jomova K, Valko M (2011). Advances in metal-induced oxidative stress and human disease. Toxicology, 283 (2-3), 65-87.

7. Lankin VZ, Tikhaze AK (2003). Free radical lipoperoxidation during atherosclerosis and antioxidative therapy of this disease. Free Radicals, Nitric Oxide, and Inflammation: Molecular, Biochemical, and Clinical Aspects (Tomasi A (eds.) et al.). NATO Science Series, (344), 218-231.

8. Lankin VZ, Konovalova GG, Tikhaze AK, Shumaev KB, Kumskova EM, Viigmaa M (2014). The initiation of free radical peroxidation of low-density lipoproteins by glucose and its metabolite methylglyoxal: a common molecular mechanism of vascular wall injure in atherosclerosis and diabetes. Mol. Cell. Biochem., 395 (1-2), 241-252.

9. Lankin VZ, Tikhaze AK, Konovalova GG, Kumskova EM, Shumaev KB (2010). Aldehyde-dependent modification of low-density lipoproteins. Handbook of lipoprotein research (Rathbound JE (ed.)), 85-107.

10. Lankin VZ, Tikhaze AK, Kumskova EM (2012). Macrophages actively accumulate malonyldialdehyde-modified but not enzymatically oxidized low-density lipoprotein. Mol. Cell. Biochem., 365 (1-2), 93-98.

11. Lindgren FT (1975). Preparative ultracentrifugal laboratory procedures and suggestions for lipoprotein analysis. Analysis of lipids and lipoproteins (Perkins EG (ed.)). Amer. Oil. Chemists’Soc., 204-224.

12. Miettinen TA, Gylling H, Vanhanen H, Ollus A (1992). Cholesterol absorption, elimination, and synthesis related to LDL kinetics during varying fat intake in men with different apoprotein E phenotypes. Arteriosclerosis Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., (12), 1044-1052.

13. Niedowicz DM, Daleke DL (2005). The role of oxidative stress in diabetic complications. Cell. Biochem. Biophys., 43 (2), 289-330.

14. Requena JR, Fu MX, Ahmed MU, Jenkins AJ, Lyons TJ, Baynes JW, Thorpe SR (1997). Quantification of malondialdehyde and 4-hydroxynonenal adducts to lysine residues in native and oxidized human low-density lipoprotein. Biochem. J., 322, 317-325.

15. Staines WA, Meister B, Melander T, Nagy JI, Hokfelt TJ (1988). Three-color immunofluorescence h istochemistry allowing triple labeling within a single section. Histochem. Cytochem, (36), 145-151.

16. Tertov VV, Kaplun VV, Dvoryantsev SN, Orechov AN (1995). Apolipoprotein B-bound lipids as a marker for evaluation of low-density lipoprotein oxidation in vivo. Biochem. Biophys. Res. Commun., (214), 608-613.

17. Witz G (1989). Biological interactions of α,β-unsaturated aldehydes. Free Rad. Biol. Med., (7), 333-349.

18. Yla-Herttuala S (1991). Macrophages and oxidized low-density lipoproteins in the pathogenesis of atherosclerosis. Ann. Med., 23 (5), 561-567.


Для цитирования:


Гречникова М.А., Домогатский С.П., Коновалова Г.Г., Тихазе А.К., Ланкин В.З. Клиренс карбонил-мофици-рованных липопротеидов из кровотока кроликов. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(3(2)):104-108. https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142

For citation:


Grechnikova M.A., Domogatskiy S.P., Konovalova G.G., Tikhaze A.K., Lankin V.Z. Clearance of carbonyl-modified lipoproteins from the bloodstream of rabbits. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(3(2)):104-108. (In Russ.) https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142

Просмотров: 282


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2541-9420 (Print)
ISSN 2587-9596 (Online)