Клиренс карбонил-мофици-рованных липопротеидов из кровотока кроликов
https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142
- Р Р‡.МессенРТвЂВВВВВВВВжер
- РћРТвЂВВВВВВВВнокласснРСвЂВВВВВВВВРєРСвЂВВВВВВВВ
- LiveJournal
- Telegram
- ВКонтакте
- РЎРєРѕРїРСвЂВВВВВВВВровать ссылку
Полный текст:
Аннотация
Исследовали клиренс альдегид-модифицированных липопротеидов низкой плотности (ЛНП) у кроликов с использованием изолированных при помощи препаративного ультрацентрифугирования биотинилированных ЛНП кроликов и ФИТЦ-меченых ЛНП человека. Глиоксаль- и метилглиоксаль-модифицированные ЛНП кроликов и человека циркулируют в кровотоке такое же время, что и нативные ЛНП. МДА-модифицированные ЛНП быстро элиминируются из кровотока. Вероятно, глиоксаль- и метилглиоксаль-модифицированные ЛНП более атерогенны, в то время как МДА-модифицированные ЛНП могут подвергаться усиленной утилизации.
Об авторах
М. А. Гречникова
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава РФ
Россия
Россия
С. П. Домогатский
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава РФ
Россия
Россия
Г. Г. Коновалова
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия
Россия
А. К. Тихазе
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия
Россия
В. З. Ланкин
ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс»
Россия
Россия
Список литературы
1. Ланкин В.З., Тихазе А.К., Капелько В.И., Шепелькова Г.С., Шумаев К.Б., Панасенко О.М., Коновалова Г.Г., Беленков Ю.Н. Механизмы окислительной модификации липопротеидов низкой плотности при окислительном и карбонильном стрессе // Биохимия. - 2007. - Т. 72, № 10. - С. 1330-1341
2. Bayer EA, Wilchek M (1990). Protein biotinylation. Meth. Enzymol., (184), 138-160.
3. Cartun RW, Pedersen CA (1989). An immunocytochemical technique offering increased sensitivity and lowered cost with a streptavidin-horseradish peroxidase conjugate. J. Histotechnol., 12 (4), 273-277.
4. Goldstein JL, Brown MS (2009). History of discovery: the LDL receptor. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 29 (4), 431-438.
5. Gylling H, Kontula K, Miettinen TA (1995). Cholesterol absorption and metabolism and LDL kinetics in healthy men with different apoprotein E phenotypes and apoprotein B Xba I and LDL receptor Pvu II genotypes. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., (15), 208-213.
6. Jomova K, Valko M (2011). Advances in metal-induced oxidative stress and human disease. Toxicology, 283 (2-3), 65-87.
7. Lankin VZ, Tikhaze AK (2003). Free radical lipoperoxidation during atherosclerosis and antioxidative therapy of this disease. Free Radicals, Nitric Oxide, and Inflammation: Molecular, Biochemical, and Clinical Aspects (Tomasi A (eds.) et al.). NATO Science Series, (344), 218-231.
8. Lankin VZ, Konovalova GG, Tikhaze AK, Shumaev KB, Kumskova EM, Viigmaa M (2014). The initiation of free radical peroxidation of low-density lipoproteins by glucose and its metabolite methylglyoxal: a common molecular mechanism of vascular wall injure in atherosclerosis and diabetes. Mol. Cell. Biochem., 395 (1-2), 241-252.
9. Lankin VZ, Tikhaze AK, Konovalova GG, Kumskova EM, Shumaev KB (2010). Aldehyde-dependent modification of low-density lipoproteins. Handbook of lipoprotein research (Rathbound JE (ed.)), 85-107.
10. Lankin VZ, Tikhaze AK, Kumskova EM (2012). Macrophages actively accumulate malonyldialdehyde-modified but not enzymatically oxidized low-density lipoprotein. Mol. Cell. Biochem., 365 (1-2), 93-98.
11. Lindgren FT (1975). Preparative ultracentrifugal laboratory procedures and suggestions for lipoprotein analysis. Analysis of lipids and lipoproteins (Perkins EG (ed.)). Amer. Oil. Chemists’Soc., 204-224.
12. Miettinen TA, Gylling H, Vanhanen H, Ollus A (1992). Cholesterol absorption, elimination, and synthesis related to LDL kinetics during varying fat intake in men with different apoprotein E phenotypes. Arteriosclerosis Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., (12), 1044-1052.
13. Niedowicz DM, Daleke DL (2005). The role of oxidative stress in diabetic complications. Cell. Biochem. Biophys., 43 (2), 289-330.
14. Requena JR, Fu MX, Ahmed MU, Jenkins AJ, Lyons TJ, Baynes JW, Thorpe SR (1997). Quantification of malondialdehyde and 4-hydroxynonenal adducts to lysine residues in native and oxidized human low-density lipoprotein. Biochem. J., 322, 317-325.
15. Staines WA, Meister B, Melander T, Nagy JI, Hokfelt TJ (1988). Three-color immunofluorescence h istochemistry allowing triple labeling within a single section. Histochem. Cytochem, (36), 145-151.
16. Tertov VV, Kaplun VV, Dvoryantsev SN, Orechov AN (1995). Apolipoprotein B-bound lipids as a marker for evaluation of low-density lipoprotein oxidation in vivo. Biochem. Biophys. Res. Commun., (214), 608-613.
17. Witz G (1989). Biological interactions of α,β-unsaturated aldehydes. Free Rad. Biol. Med., (7), 333-349.
18. Yla-Herttuala S (1991). Macrophages and oxidized low-density lipoproteins in the pathogenesis of atherosclerosis. Ann. Med., 23 (5), 561-567.
Рецензия
Для цитирования:
Гречникова М.А., Домогатский С.П., Коновалова Г.Г., Тихазе А.К., Ланкин В.З. Клиренс карбонил-мофици-рованных липопротеидов из кровотока кроликов. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(3(2)):104-108. https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142
For citation:
Grechnikova M.A., Domogatskiy S.P., Konovalova G.G., Tikhaze A.K., Lankin V.Z. Clearance of carbonyl-modified lipoproteins from the bloodstream of rabbits. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(3(2)):104-108. (In Russ.) https://doi.org/10.12737/article_590823a4b59f98.13160142
Просмотров:
706
ISSN 2541-9420 (Print)
ISSN 2587-9596 (Online)
ISSN 2587-9596 (Online)
Послать статью по эл. почте 
