Антибиотикоустойчивость энтеробактерий, выделенных из поверхностных водных объектов разных природно-климатических зон
https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.3.15
Аннотация
Важной проблемой современности является устойчивость бактерий к антимикробным препаратам. Поверхностные водные объекты аккумулируют всевозможные варианты антибиотикоустойчивых бактерий, встречающихся на водосборной территории.
Цель исследования. Сравнить антибиотикоустойчивость энтеробактерий, выделенных из пресноводных экосистем Мурманской и Рязанской областей.
Методы. Выделение энтеробактерий проводили диско-диффузным методом. Для видовой идентификации использовали тест-систему «Рапидэнтеро 200 М». Определение чувствительности проводили к 19 антибактериальным препаратам диско-диффузным методом в соответствии с требованиями МУК 4.2.1980-04 и Клиническими рекомендациями (2014). Интерпретацию данных осуществляли с использованием критериев EUCAST v. 7.0 (2017) и программного пакета «WHONET».
Результаты. В 2016 г. из водных объектов Рязанской области был выделен 771 изолят энтеробактерий, Мурманской области – 323. Результаты показали, что энтеробактерии были обнаружены во всех обследованных поверхностных водных объектах. В Рязанской области доминировали Citrobacter (36 %), Escherichia coli (21 %) и Providencia (21 %), а в Мурманской области – Citrobacter (35 %) и Enterobacter (21 %). В обоих регионах доминируют энтеробактерии, устойчивые к одному и более антимикробному препарату. Фенотипом множественной лекарственной устойчивости (MDR) обладали 82,62 % изолятов в Рязанской области и 95,98 % – в Мурманской. Фенотип экстремальной резистентности (XDR) чаще встречался среди энтеробактерий, выделенных из водных объектов Рязанской области. В обоих районах был достаточно высокий уровень резистентности к беталактамным антибиотикам. В обоих регионах самой эффективной группой антимикробных препаратов, подавляющих рост энтробактерий, были хинолоны.
Заключение. Результаты исследования показывают, что распространение антибиотикоустойчивых изолятов энтеробактерий в пресноводных экосистемах происходит повсеместно, однако в северных водоёмах этот процесс происходит медленнее.
Об авторах
Е. А. ЗацариннаяРоссия
младший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории эволюционной экологии; младший научный сотрудник лаборатории геоэкологии и рационального природопользования Арктики
390000, г. Рязань, ул. Свободы, 46, Россия
184209, г. Апатиты, мкр. Академгородок, 14а, Россия
Н. В. Колупаева
Россия
младший научный сотрудник отдела подготовки и усовершенствования специалистов
142279, г.о. Серпухов, п. Оболенск, Территория «Квартал А», 24, Россия
Л. В. Колупаева
Россия
младший научный сотрудник отдела подготовки и усовершенствования специалистов
142279, г.о. Серпухов, п. Оболенск, Территория «Квартал А», 24, Россия
Список литературы
1. Mohr KI. History of antibiotics research. Curr Top Microbiol Immunol. 2016; 398: 237-272. doi: 0.1007/82_2016_499
2. Martinez JL. The role of natural environments in the evolution of resistance traits in pathogenic bacteria. Proc Biol Sci. 2009; 276(1667): 2521-2530. doi: 10.1098/rspb.2009.0320
3. Huijbers PMC, Blaak H, de Jong MCM, Graat EAM, Vandenbroucke-Grauls CMJE, Husman AM. Role of the environment in the transmission of antimicrobial resistance to humans: A review. Environ Sci Technol. 2015; 49(20): 11993-12004. doi: 10.1021/acs.est.5b02566
4. Wellington EMH, Boxall AB, Cross P, Feil EJ, Gaze WH, Hawkey PM, et al. The role of the natural environment in the emergence of antibiotic resistance in gram-negative bacteria. Lancet Infect Dis. 2013; 13(2): 155-165. doi: 10.1016/S1473-3099(12)70317-1
5. Furness LE, Campbell A, Zhang L, Gaze WH, McDonald RA. Wild small mammals as sentinels for the environmental transmission of antimicrobial resistance. Environ Res. 2017; 154: 28-34. doi: 10.1016/j.envres.2016.12.014
6. Guenther S, Semmler T, Stubbe A, Stubbe M, Wieler LH, Schaufler K. Chromosomally encoded ESBL genes in Escherichia coli of ST38 from Mongolian wild birds. J Antimicrob Chemother. 2017; 72(5): 1310-1313. doi: 10.1093/jac/dkx006
7. Burnham JP. Climate change and antibiotic resistance: A deadly combination. Ther Adv Infectious Dis. 2021; 8: 2049936121991374. doi: 10.1177/2049936121991374
8. Кузьменков А.Ю., Виноградова А.Г., Трушин И.В., Эйдельштейн М.В., Авраменко А.А., Дехнич А.В. и др. AMRmap – система мониторинга антибиотикорезистентности в России. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2021; 23(2): 198-204. doi: 10.36488/cmac.2021.2.198-204
9. Magiorakos AP, Srinivasan A, Carey RB, Carmeli Y, Falagas ME, Giske CG, et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: An international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin Microbiol Infect. 2012; 18(3): 268-281. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x
10. Зацаринная Е.А. Оценка состояния водных объектов Рязанской области на основе анализа распределения и антибиотикорезистентности общих колиформных бактерий. Естественные и технические науки. 2014; 1(69): 60-64.
11. Зацаринная Е.А. Микробиологические подходы в оценке антропогенного влияния на реки приграничных районов северозапада России.Естественные и технические науки. 2014; 1(69): 55-59.
Рецензия
Для цитирования:
Зацаринная Е.А., Колупаева Н.В., Колупаева Л.В. Антибиотикоустойчивость энтеробактерий, выделенных из поверхностных водных объектов разных природно-климатических зон. Acta Biomedica Scientifica. 2022;7(3):142-149. https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.3.15
For citation:
Zatsarinnaya E.A., Kolupaeva N.V., Kolupaeva L.V. Antibiotic resistance of enterobacteria isolated from freshwater bodies of different climatic zones. Acta Biomedica Scientifica. 2022;7(3):142-149. (In Russ.) https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.3.15