Preview

Acta Biomedica Scientifica

Расширенный поиск

Эпизоотическая ситуация по анаплазмозу мелких жвачных животных на территории Иркутской области

https://doi.org/10.29413/ABS.2021-6.1.9

Полный текст:

Аннотация

Анаплазмозы жвачных животных – это группа природно-очаговых инфекций, вызываемых бактериями из рода Anaplasma семейства Anaplasmataceae. Основным этиологическим агентом анаплазмоза овец, коз, а также диких жвачных животных является Anaplasma ovis, которая паразитирует в эритроцитах этих животных. На сегодняшний день информация о наличии очагов анаплазмоза мелких жвачных животных на территории Иркутской области отсутствовала. Цель данной работы – индикация и идентификация анаплазм в крови овец и коз с помощью молекулярно-генетических методов, получение данных о широте распространения очагов анаплазмозов на территории Иркутской области. На наличие ДНК анаплазм были исследованы 20 образцов крови коз, 611 образцов крови овец и 209 клещей Dermacentor nuttalli из 12 районов Иркутской области. Только один вид анаплазм – A. ovis – был обнаружен среди генотипированных образцов. A. ovis была обнаружена в крови овец и коз во всех исследуемых районах Иркутской области. Доля образцов крови овец, содержащих ДНК анаплазм, варьировала от 30 % до 85 %, коз – от 10 % до 100 % в разных районах региона, составив в среднем по Иркутской области у овец – 57,8 %, у коз – 55,0 %. Заражённость A. ovis клещей D. nuttalli составила 5,7 %. A. ovis выявлена у домашних животных, принадлежащих различным собственникам, что свидетельствует о широком распространении очагов анаплазмоза домашних мелких жвачных животных на территории региона. Нуклеотидные последовательности образцов, выявленные в крови овец и коз на территории Иркутской области, различались между собой единичной нуклеотидной заменой и были идентичны последовательностям типового штамма Haibei, а также последовательностям A. ovis, обнаруженным ранее в крови овец из Монголии, оленей из Китая, а также клещей Dermacentor niveus и Dermacentor nuttalli из Китая. Эти последовательности также были идентичны последовательностям, обнаруженным ранее в крови овец из Алтая и в клещах D. nuttalli из Тувы, что свидетельствует о широком распространении данных геновариантов A. ovis на территории Сибири и о вероятной роли клещей D. nuttalli в качестве переносчика возбудителя анаплазмоза мелких жвачных животных в Иркутской области.

Об авторах

О. В. Сунцова
ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»
Россия

Сунцова Ольга Владимировна – кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и генетической диагностики

664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева 16



В. А. Рар
ФГБУН Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук
Россия

Рар Вера Александровна – кандидат биологических наук, научный сотрудник

630090, г. Новосибирск, пр. Лаврентьева, 8



О. В. Лисак
ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»
Россия

Лисак Оксана Васильевна – младший научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и генетической диагностики

664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева 16



И. В. Мельцов
ФГБОУ ВО Иркутский государственный аграрный университет им. А.А. Ежевского
Россия

Мельцов Иван Владимирович – кандидат ветеринарных наук, доцент

664038, Иркутская обл., Иркутский р-н, п. Молодёжный



Е. К. Дорощенко
ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»
Россия

Дорощенко Елена Константиновна – кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и генетической диагностики

664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева 16



Ю. С. Савинова
ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»
Россия

Савинова Юлия Сергеевна – младший научный сотрудник лаборатории молекулярной эпидемиологии и генетической диагностики

664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева 16



А. Ю. Тикунов
ФГБУН Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук
Россия

Тикунов Артем Юрьевич – научный сотрудник 

630090, г. Новосибирск, пр. Лаврентьева, 8



И. В. Козлова
ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека»
Россия

Козлова Ирина Валерьевна – доктор медицинских наук, заведующая лабораторией молекулярной эпидемиологии и генетической диагностики

664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева 16



Список литературы

1. Torina A, Vicente J, Alongi A, Scimeca S, Turlá R, Nicosia S, et al. Observed prevalence of tick-borne pathogens in domestic animals in Sicily, Italy during 2003-2005. Zoonoses Public Health. 2007; 54(1): 8-15. doi: 10.1111/j.1863-2378.2007.00989.x

2. Battilani M, de Arcangeli S, Balboni A, Dondi F. Genetic epidemiology of Anaplasma. Infect Genet Evol. 2017; 49: 195-211. doi: 10.1016/j.meegid.2017.01.021

3. Dumler JS, Barbet AF, Bekker CP, Dasch GA, Palmer GH, Ray SC, et al. Reorganization of genera in the families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: Unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and‘HGE agent’as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. Int J Syst Evol Microbiol. 2001; 51(6): 2145-2165. doi: 10.1099/00207713-51-6-2145

4. Li H, Zheng YC, Ma L, Jia N, Jiang BG, Jiang RR, et al. Human infection with a novel tick-borne Anaplasma species in China: A surveillance study. Lancet Infect Dis. 2015; 15: 663-670. doi: 10.1016/S1473-3099(15)70051-4

5. Silaghi C, Santos AS, Gomes J, Christova I, Matei IA, Walder G, et al. Guidelines for the direct detection of Anaplasma spp. in diagnosis and epidemiological studies. Vector Borne Zoonotic Dis. 2017; 17(1): 12-22. doi: 10.1089/vbz.2016.1960

6. Renneker S, Abdo J, Salih DE, Karagenç T, Bilgiç H, Torina A, et al. Can Anaplasma ovis in small ruminants be neglected any longer? Transbound Emerg Dis. 2013; 60(Suppl 2): 105-112. doi: 10.1111/tbed.12149

7. Ben Said M, Belkahia H, Messadi L. Anaplasma spp. in North Africa: A review on molecular epidemiology, associated risk factors and genetic characteristics. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(3): 543-555. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.01.003

8. Enkhtaivan B, Narantsatsral S, Davaasuren B, Otgonsuren D, Amgalanbaatar T, Uuganbayar E, et al. Molecular detection of Anaplasma ovis in small ruminants and ixodid ticks from Mongolia. Parasitol Int. 2019; 69: 47-53. doi: 10.1016/j.parint.2018.11.004

9. Friedhoff KT. Tick-borne diseases of sheep and goats caused by Babesia, Theileria or Anaplasma spp. Parassitologia, 1997; 39(2): 99-109.

10. De la Fuente J, Massung RF, Wong SJ, Chu FK, Lutz H, Meli M, et al. Sequence analysis of the msp4 gene of Anaplasma phagocytophilum strains. J Clin Microbiol. 2005; 43: 1309-1317. doi: 10.1128/JCM.43.3.1309-1317.2005

11. Sayin F, Dyncer S, Karaer Z, Cakmak A, Yukary BA, Eren H, et al. Status of the tick-borne diseases in sheep and goats in Turkey. Parassitologia. 1997; 39(2): 153-156.

12. Pereira A, Parreira R, Nunes M, Casadinho A, Vieira ML, Campino L, et al. Molecular detection of tick-borne bacteria and protozoa in cervids and wild boars from Portugal. Parasit Vectors. 2016; 9(1): 251. doi: 10.1186/s13071-016-1535-0

13. Han R, Yang JF, Mukhtar MU, Chen Z, Niu QL, Lin YQ, et al. Molecular detection of Anaplasma infections in ixodid ticks from the Qinghai-Tibet Plateau. Infect Dis Poverty. 2019; 8(1): 12. doi: 10.1186/s40249-019-0522-z

14. Yin H, Luo J. Ticks of small ruminants in China. Parasitol Res. 2007; 101: 187-189. doi: 10.1007/s00436-007-0688-3

15. Derdáková M, Stefančíková A, Spitalská E, Tarageľová V, Košťálová T, Hrkľová G, et al. Emergence and genetic variability of Anaplasma species in small ruminants and ticks from Central Europe. Vet Microbiol. 2011; 153: 293-298. doi: 10.1016/j.vetmic.2011.05.044

16. Рар В.А., Марченко В.А., Бирюков И.В. К эпизоотологии анаплазмозов жвачных животных юга Западной Сибири. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2019; (7): 109-115.

17. Aktas M, Özübek S. Anaplasma ovis genetic diversity detected by major surface protein 1a and its prevalence in small ruminants. Vet Microbiol. 2018; 217: 13-17. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.02.026

18. Ciani E, Alloggio I, Petazzi F, Pieragostini E. Looking for prognosticators in ovine anaplasmosis: discriminant analysis of clinical and haematological parameters in lambs belonging to differently susceptible breeds experimentally infected with Anaplasma ovis. Acta Vet Scand. 2013; 55(1): 71. doi: 10.1186/1751-0147-55-71

19. Hornok S, Elek V, de la Fuente J, Naranjo V, Farkas R, Gábor Majoros G, et al. First serological and molecular evidence on the endemicity of Anaplasma ovis and A. marginale in Hungary. Vet Microbiol. 2007; 122(3-4): 316-322. doi: 10.1016/j.vetmic.2007.01.024

20. Yasini S, Khaki Z, Rahbari S, Kazemi B, Salar Amoli J, Gharabaghi A, et al. Hematologic and Clinical Aspects of Experimental Ovine Anaplasmosis Caused by Anaplasma ovis in Iran. Iran J Parasitol. 2012; 7(4): 91-98.

21. Jiménez C, Benito A, Arnal JL, Ortín A, Gómez M, López A, et al. Anaplasma ovis in sheep: Experimental infection, vertical transmission and colostral immunity. Small Ruminant Research. 2019; 178: 7-14. doi: 10.1016/j.smallrumres.2019.07.003

22. Chochlakis D, Ioannou I, Tselentis Y, Psaroulaki A. Human anaplasmosis and Anaplasma ovis variant. Emerg Infect Dis. 2010; 16(6): 1031-1032. doi: 10.3201/eid1606.090175

23. Stuen S, Granquist EG, Silaghi C. Anaplasma phagocytophilum – a widespread multi-host pathogen with highly adaptive strategies. Front Cell Infect Microbiol. 2013; 3: 31. doi: 10.3389/fcimb.2013.00031

24. Guo WP, Tie WF, Meng S, Li D, Wang JL, Du LY, et al. Extensive genetic diversity of Anaplasmabovis in ruminants in Xi’an, China. Ticks Tick Borne Dis. 2020; 11(5): 101477. doi: 10.1016/j. ttbdis.2020.101477

25. Guo WP, Huang B, Zhao Q, Xu G, Liu B, Wang YH, et al. Human-pathogenic Anaplasma spp., and Rickettsia spp. in animals in Xi’an, China. PLoS Negl Trop Dis. 2018; 12(11): e0006916. doi: 10.1371/journal.pntd.0006916

26. Liu Z, Ma M, Wang Z, Wang J, Peng Y, Li Y, et al. Molecular survey and genetic identification of Anaplasma species in goats from central and southern China. Appl Environ Microbiol. 2012; 78(2): 464-470. doi: 10.1128/AEM.06848-11

27. Козлова Н.П. Совершенствование методов диагностики, профилактики и лечения при ассоциированном анаплазмозе крупного рогатого скота: автореф. дис. … канд. вет. наук. Омск; 2007.

28. Логвинов А.Н Анаплазмоз овец: распространение, патоморфологические проявления и профилактика: автореф. дис. … канд. вет. наук. Ставрополь: Ставропольский государственный аграрный университет; 2016.

29. Рар В.А., Епихина Т.И., Ефремова Е.А., Марченко В.А., Сунцова О.В., Лисак О.В., и др. Молекулярно-генетический анализ возбудителей анаплазмозов сельскохозяйственных животных на территории Западной и Восточной Сибири. Acta Biomedica Scientifi a (East Siberian Biomedical Journal). 2015; (5): 83-87.

30. Рар В.А., Епихина Т.И., Ливанова Н.Н., Панов В.В., Дорощенко Е.К., Пуховская Н.М., и др. Изучение гетерогенности гена 16S рРНК и groESL-оперона в образцах ДНК A. phagocytophilum, E. muris и «Candidatus Neoehrlichia mikurensis», выявленных в таежных клещах на территории Урала, Сибири и Дальнего Востока. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2011; (2): 17-23.

31. Rar VA, Pukhovskaya NM, Ryabchikova EI, Vysochina NP, Bakhmetyeva SV, Zdanovskaia NI, et al. Molecular-genetic and ultrastructural characteristics of‘Candidatus Ehrlichia khabarensis’, a new member of the Ehrlichia genus. Ticks Tick Borne Dis. 2015; 6(5): 658-667. doi: 10.1016/j.ttbdis.2015.05.012

32. Han R, Yang J, Liu Z, Gao S, Niu Q, Hassan MA, et al. Characterization of Anaplasma ovis strains using the major surface protein 1a repeat sequences. Parasit Vectors. 2017; 10(1): 447. doi: 10.1186/s13071-017-2363-6

33. Eisawi NM, El Hussein ARM, Hassan DA, Musa AB, Hussien MO, Enan KA, et al. A molecular prevalence survey on Anaplasma infection among domestic ruminants in Khartoum State, Sudan. Trop Anim Health Prod. 2020; 52(4): 1845-1852. doi: 10.1007/s11250-019-02176-7

34. Torina A, Galindo RC, Vicente J, Di Marco V, Russo M, Aronica V, et al. Characterization of Anaplasma phagocytophilum and A. ovis infection in a naturally infected sheep flock with poor health condition. Trop Anim Health Prod. 2010; 42(7): 1327-1331. doi: 10.1007/s11250-010-9580-8

35. Kang YJ, Diao XN, Zhao GY, Chen MH, Xiong Y, Shi M, et al. Extensive diversity of Rickettsiales bacteria in two species of ticks from China and the evolution of the Rickettsiales. BMC Evol Biol. 2014; 14: 167. doi: 10.1186/s12862-014-0167-2

36. Ochirkhuu N, Konnai S, Odbileg R, Murata S, Ohashi K. Molecular epidemiological survey and genetic characterization of Anaplasma species in Mongolian livestock. Vector Borne Zoonotic Dis. 2017; 17(8): 539-549. doi: 10.1089/vbz.2017.2111

37. Zhang Y, Lv Y, Cui Y, Wang J, Cao S, Jian F, et al. First molecular evidence for the presence of Anaplasma DNA in milk from sheep and goats in China. Parasitol Res. 2016; 115(7): 2789-2795. doi: 10.1007/s00436-016-5028-z

38. Hailemariam Z, Krücken J, Baumann M, Ahmed JS, Clausen PH, Nijhof AM. Molecular detection of tick-borne pathogens in cattle from Southwestern Ethiopia. PLoS One. 2017; 12(11): e0188248. doi: 10.1371/journal.pone.0188248


Для цитирования:


Сунцова О.В., Рар В.А., Лисак О.В., Мельцов И.В., Дорощенко Е.К., Савинова Ю.С., Тикунов А.Ю., Козлова И.В. Эпизоотическая ситуация по анаплазмозу мелких жвачных животных на территории Иркутской области. Acta Biomedica Scientifica. 2021;6(1):60-68. https://doi.org/10.29413/ABS.2021-6.1.9

For citation:


Suntsova O.V., Rar V.A., Lisak O.V., Meltsov I.V., Doroschenko E.K., Savinova Yu.S., Tikunov A.Yu., Kozlova I.V. Epizootic Situation on Anaplasmosis of Small Ruminants in the Irkutsk Region. Acta Biomedica Scientifica. 2021;6(1):60-68. (In Russ.) https://doi.org/10.29413/ABS.2021-6.1.9

Просмотров: 116


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2541-9420 (Print)
ISSN 2587-9596 (Online)