Preview

Acta Biomedica Scientifica

Расширенный поиск

Роль факторов роста при спаечном процессе в брюшной полости

https://doi.org/10.29413/ABS.2019-4.5.16

Полный текст:

Аннотация

Факторы роста – высокоспециализированные биологически активные низкомолекулярные полипептиды, контролирующие процессы роста, развития и поддержания клеточных популяций. Систематический обзор посвящён роли различных факторов роста в развитии спаечного процесса в брюшной полости. Показано, что в развитии спаечного процесса в брюшной полости участвуют такие факторы роста, как ростовой фактор эндотелия сосудов, фактор роста фибробластов, трансформирующий фактор роста, тромбоцитарный фактор роста, инсулиноподобный ростовой фактор и фактор роста кератиноцитов. Каждый из перечисленных факторов вносит значительный вклад в процесс образования перитонеального фиброза. В развитии непосредственно спаечного процесса в брюшной полости главной молекулой является TGF-β1. На ранних сроках после повреждения перитонеальной брюшины значимое влияние оказывают вазоэндотелиальный фактор роста и фактор роста соединительной ткани. Показано, что блокирование трансформирующего фактора роста, вазоэндотелиального фактора роста, инсулиноподобного фактора роста, а также рецептора эпидермального фактора роста ослабляет перитонеальный фиброз.
Таким образом, повреждение любой ткани инициирует сложный многоступенчатый процесс, который регулируется большим количеством цитокинов и факторов роста. Ростовые факторы контролируют миграцию, пролиферацию, дифференцировку и выживание клеток. Кроме того, они способны влиять на экспрессию других факторов, участвующих в регенеративном ответе. Понимание процесса, развивающегося при формировании спаечного процесса в брюшной полости и влияющих на него ростовых факторов имеет важное значение для дальнейшего применения их с целью предотвращения патологического процесса.

Об авторах

Н. Н. Дремина
ФГБНУ «Иркутский научный центр хирургии и травматологии»
Россия

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий и регенеративной медицины

664003, г. Иркутск, ул. Борцов Революции, 1, Россия



М. Г. Шурыгин
ФГБНУ «Иркутский научный центр хирургии и травматологии»
Россия

доктор медицинских наук, заведующий научно-лабораторным отделом

664003, г. Иркутск, ул. Борцов Революции, 1, Россия



Е. Е. Чепурных
ФГБНУ «Иркутский научный центр хирургии и травматологии», ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

кандидат медицинских наук, учёный секретарь; доцент кафедры госпитальной хирургии

664003, г. Иркутск, ул. Борцов Революции, 1, Россия

664003, г. Иркутск, ул. Красного Восстания, 1, Россия



И. А. Шурыгина
ФГБНУ «Иркутский научный центр хирургии и травматологии»
Россия

доктор медицинских наук, профессор РАН, заместитель директора по научной работе

664003, г. Иркутск, ул. Борцов Революции, 1, Россия



Список литературы

1. Maddaluno L, Urwyler C, Werner S. Fibroblast growth factors: key players in regeneration and tissue repair. Development. 2017; 144(22): 4047-4060. doi: 10.1242/dev.152587

2. Zhao J, Hu L, Liu J, Gong N, Chen L. The effects of cytokines in adipose stem cell-conditioned medium on the migration and proliferation of skin fibroblasts in vitro. BioMed. Research. International. 2013; 2013: 578479. doi: 10.1155/2013/578479

3. Apte RS, Chen DS, Ferrara N. VEGF in signaling and disease: beyond discovery and development. Cell. 2019; 176(6): 1248-1264. doi: 10.1016/j.cell.2019.01.021

4. Шурыгин М.Г., Шурыгина И.А., Дремина Н.Н. Динамика факторов роста эндотелия сосудов и фибробластического фактора роста при экспериментальном инфаркте миокарда. Acta Biomedica Scientifica. 2007; 6(58): 169-174.

5. Шурыгин М.Г., Шурыгина И.А., Дремина Н.Н. Влияние фактора роста эндотелия сосудов на уровень коллагенообразования в процессе развития постинфарктного кардиосклероза. Сибирский медицинский журнал. 2008; 78(3): 53-55.

6. Шурыгин М.Г., Шурыгина И.А. Фактор роста фибробластов как стимулятор ангиогенеза при инфаркте миокарда. Бюллетень СО РАМН. 2010; 30(6): 89-92.

7. Dolivo DM, Larson SA, Dominko T. Fibroblast growth factor 2 as an antifibrotic: antagonism of myofibroblast differentiation and suppression of pro-fibrotic gene expression. Cytokine Growth Factor Rev. 2017; 38: 49-58. doi: 10.1016/ j.cytogfr. 2017.09.003

8. Аюшинова Н.И., Шурыгина И.А., Шурыгин М.Г., Григорьев Е.Г. Госпитальная эпидемиология спаечной болезни брюшной полости. Acta Biomedica Scientifica. 2016; 1. 4(110): 115-118.

9. Tomino Y. Mechanisms and interventions in peritoneal fibrosis. Clin Exp Nephrol. 2012; 16(1): 109-114. doi: 10.1007/s10157-011-0533-y

10. Takai S, Yoshino M, Takao K, Yoshikawa K, Jin D. Periostin antisense oligonucleotide prevents adhesion formation after surgery in mice. J Pharmacol Sci. 2017; 133(2): 65-69. doi: 10.1016/j.jphs.2016.10.009

11. Lv ZD, Zhao WJ, Jin LY, Wang WJ, Dong Q, Li N, Xu H.M, Wang HB. Blocking TGF-β1 by P17 peptides attenuates gastric cancer cell induced peritoneal fibrosis and prevents peritoneal dissemination in vitro and in vivo. Biomed Pharmacother. 2017; 88: 27-33. doi: 10.1016/j.biopha.2017.01.039

12. Bianchi E, Boekelheide K, Sigman M, Lamb DJ, Hall SJ, Hwang K. Ghrelin inhibits post-operative adhesions via blockage of the TGF-β signaling pathway. PLoS One. 2016; 11(4): e0153968. doi: 10.1371/journal.pone.0153968

13. Сахаров В.Н., Литвицкий П.Ф. Роль различных фенотипов макрофагов в развитии заболеваний человека. Вестник РАМН. 2015; (1): 26-31.

14. Ma TT, Meng XM. TGF-β/Smad and renal fibrosis. Adv Exp Med Biol. 2019; 1165: 347-364. doi: 10.1007/978-981-13-8871-2_16

15. Loureiro J, Aguilera A, Selgas R, Sandoval P, Albar-Vizcaíno P, Pérez-Lozano ML, et al. Blocking TGF-β1 protects the peritoneal membrane from dialysate-induced damage. J Am Soc Nephrol. 2011; 22(9): 1682-1695. doi: 10.1681/ASN.2010111197

16. Abrahams AC, Habib SM, Dendooven A, Riser BL, van der Veer JW, Toorop RJ, et al. Patients with encapsulating peritoneal sclerosis have increased peritoneal expression of connective tissue growth factor (CCN2), transforming growth factor-β1, and vascular endothelial growth factor. PLoS One. 2014; 9(11): e112050. doi: 10.1371/journal.pone.0112050

17. Thaler K, Mack JA, Berho M, Grotendorst G, Wexner SD, Abramson SR. Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation. Eur Surg Res. 2005; 37(4): 235-241.

18. Wang Q, Usinger W, Nichols B, Gray J, Xu L, Seeley TW, Brenner M, Guo G, Zhang W, Oliver N, Lin A, Yeowell D. Cooperative interaction of CTGF and TGF-beta in animal models of fibrotic disease. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011; 4(1): 4. doi.org/10.1186/1755-1536-4-4

19. Barrientos S, Stojadinovic O, Golinko MS, Brem H, Tomic-Canic M. Growth factors and cytokines in wound healing. Wound Repair Regen. 2008; 16(5): 585-601. doi: 10.1111/j.1524-475X.2008.00410.x

20. Wang L, Liu N, Xiong C, Xu L, Shi Y, Qiu A, Zang X, Mao H, Zhuang S. Inhibition of EGF receptor blocks the development and progression of peritoneal fibrosis. JASN. 2016; 27(9): 2631-2644. doi.org/10.1681/ASN.2015030299

21. Uguralp S, Akin M, Karabulut AB, Harma B, Kiziltay A, Kiran TR, Hasirci N. Reduction of peritoneal adhesions by sustained and local administration of epidermal growth factor. Pediatr Surg Int. 2008; 24(2): 191-197.

22. Acun G, Ozdemir H, Sunamak O, Ozdemir ZU, Baskan E, Yazi M, Savas B, Berberoglu U. The effect of single-dose intraperitoneal bevacizumab on peritoneal adhesion formation. Rev Invest Clin. 2018; 70(6): 279-284. doi: 10.24875/RIC.18002589

23. Gimbel ML, Chelius D, Hunt TK, Spencer EM. A novel approach to reducing postoperative intraperitoneal adhesions through the inhibition of insulinlike growth factor I activity. Arch Surg. 2001; 136(3): 311-317.

24. Wei G, Zhou C, Wang G, Fan L, Wang K, Li X. Keratinocyte growth factor combined with a sodium hyaluronate gel inhibits postoperative intra-abdominal adhesions. Int. J. Mol. Sci. 2016; 17(10): 1611. doi.org/10.3390/ijms17101611

25. Yen TT, Thao DT, Thuoc TL. An overview on keratinocyte growth factor: from the molecular properties to clinical applications. Protein Pept Lett. 2014; 21(3): 306-317.

26. Ishiguro S, Akasaka Y, Kiguchi H, Suzuki T, Imaizumi R, Ishikawa Y, Ito K, Ishii T. Basic fibroblast growth factor induces down-regulation of alpha-smooth muscle actin and reduction of myofibroblast areas in open skin wounds. Wound Repair Regen. 2009; 17(4): 617-625. doi: 10.1111/j.1524-475X.2009.00511.x

27. Li Y, Kowdley KV. Micro RNAs in common human diseases. Genomics Proteomics Bioinformatics. 2012; 10(5): 246-253. doi: 10.1016/j.gpb.2012.07.005

28. O’Reilly S. Micro RNAs in fibrosis: opportunities and challenges. Arthritis Res Ther. 2016; 18:11. doi: 10.1186/s13075-016-0929-x

29. Grella A, Kole D, Holmes W, Dominko T. FGF2 overrides TGFβ1-driven integrin ITGA11 expression in human dermal fibroblasts. J Cell Biochem. 2016; 117(4): 1000-1008. doi: 10.1002/jcb.25386


Для цитирования:


Дремина Н.Н., Шурыгин М.Г., Чепурных Е.Е., Шурыгина И.А. Роль факторов роста при спаечном процессе в брюшной полости. Acta Biomedica Scientifica. 2019;4(5):98-103. https://doi.org/10.29413/ABS.2019-4.5.16

For citation:


Dremina N.N., Shurygin M.G., Chepurnikh E.E., Shurygina I.A. Role of Growth Factors in the Adhesive Process in the Abdominal Cavity. Acta Biomedica Scientifica. 2019;4(5):98-103. (In Russ.) https://doi.org/10.29413/ABS.2019-4.5.16

Просмотров: 135


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2541-9420 (Print)
ISSN 2587-9596 (Online)