Babesia infection of small mammals from southern taiga of Omsk region
https://doi.org/10.12737/21488
Abstract
Blood samples were taken from 541 small mammal captured in 2013-2015 in Znamensky district of Omsk region from Ixodes persulcatus and Ixodes trianguliceps sympatric area and examined for the Babesia spp. presence by nested PCR with subsequent sequencing of positive samples. Babesia microti DNA was found in 31,1 % of positive samples; a proportion of infected mammals varied from 5,3 % to 61,6 % in different sampling periods. B. microti DNA was found in samples from three prevailing Myodes species as well as from a root vole (Microtus oeconomus), field voles (Microtus argestis) and Siberian chipmunks (Tamias sibiricus). It was shown that identified B. microti samples belong to two genetic groups: B. microti 'US'-type and B. microti 'Munich'-type; notably that > 90 % infected mammals contained DNA of nonpathogenic for human B. microti 'Munich'-type. We suppose that I. trianguliceps tick is the most probable vector of B. microti 'Munich'-type.
About the Authors
V. A. Rar
Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine SB RAS
Russian Federation
Russian Federation
V. V. Yakimenko
Omsk Research Institute of Natural Foci Infections
Russian Federation
Russian Federation
M. T. Makenov
Omsk Research Institute of Natural Foci Infections
Russian Federation
Russian Federation
A. Y. Tikunov
Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine SB RAS
Russian Federation
Russian Federation
T. I. Epikhina
Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine SB RAS
Russian Federation
Russian Federation
A. K. Tantsev
Omsk Research Institute of Natural Foci Infections
Russian Federation
Russian Federation
O. A. Bobrova
Omsk Research Institute of Natural Foci Infections
Russian Federation
Russian Federation
N. V. Tikunova
Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine SB RAS
Russian Federation
Russian Federation
References
1. Морозов А.В., Ковалевский Ю.В., Коренберг Э.И., Горелова Н.Б., Подлесный Л.А. Предварительные результаты выявления ДНК Babesia microti у мелких млекопитающих природного очага на Среднем Урале // Бюл. ВСНЦ СО РАМН. - 2006. - № 5. - С. 136-138
2. Нефедова В.В., Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В., Самохвалов М.В., Горелова Н.Б. Роль личинок клеща Ixodes trianguliceps в поддержании циркуляции Babesia microti на Среднем Урале // Зоол. журн. - 2012. - Т. 91, Вып. 9. - С. 1034-1042
3. Рар В.А., Епихина Т.И., Ливанова Н.Н., Панов В.В., Пуховская Н.М., Высочина Н.П., Иванов Л.И. Выявление ДНК бабезий у мелких млекопитающих и иксодовых клещей в трех различных природных очагах Северного Урала, Западной Сибири и Дальнего Востока // Молекул. генетика, микробиология и вирусология. - 2010. - № 3. - С. 26-30
4. Рар В.А., Епихина Т.И., Тикунова Н.В., Бондаренко Е.И., Иванов М.К., Якименко В.В., Малькова М.Г., Танцев А.К. Выявление ДНК переносимых иксодовыми клещами патогенов в крови мелких млекопитающих из лесной зоны Среднего Прииртышья (Омская область, Западная Сибирь) // Паразитология. - 2014. -Т. 48, № 1. - С. 37-53
5. Федулина О.О., Рар В.А., Сунцова О.В., Козлова И.В. Результаты рекогносцировочных исследований по обнаружению очагов бабезиоза на территории Иркутской области // Бюл. ВСНЦ СО РАМН. - 2013. -№ 2, Ч. 2. - С. 130-133
6. Филиппова Н.А. Иксодовые клещи подсем. Ixodinae. Фауна СССР. - Л.: Наука, 1977. - Т. 4, Вып. 4. -396 с
7. Beck R., Vojta L., Curkovic S., Mrljak V., Margaletic J., Habrun B. (2011). Molecular survey of Babesia microti in wild rodents in central Croatia. Vector Borne Zoonotic Dis., 11, 81-83.
8. Bown K.J., Lambin X., Telford G.R., Ogden N., Telfer S., Woldehiwet Z., Birtles R. (2008). Relative importance of Ixodes ricinus and Ixodes trianguliceps as vectors for Anaplasma phagocytophilum and Babesia microti in field vole (Microtus agrestis) populations. Appl. Environ. Microbiol, 74, 7118-7125.
9. Capligina V., Berzina I., Bormane A., Salmane I., Vilks K., Kazarina A., Bandere D., Baumanis V., Ranka R. (2015). Prevalence and phylogenetic analysis of Babesia spp. in Ixodes ricinus and Ixodes persulcatus ticks in Latvia. Exp. Appl. Acarol.
10. Gray J., Zintl A., Hildebrandt A., Hunfeld K., Weiss L. (2010). Zoonotic babesiosis: Overview of the disease and novel aspects of pathogen identity. Ticks Tick Borne Dis., 1, 3-10.
11. Kallio E.R., Begon M., Birtles R.J., Bown K.J., Koskela E., Mappes T., Watts P.C. (2014). First report of Anaplasma phagocytophilum and Babesia microti in rodents in Finland. Vector Borne Zoonotic Dis., 14, 389-933.
12. Katargina O., Geller J., Vasilenko V., Kuznetsova T., Järvekülg L., Vene S., Lundkvist Â., Golovljova I. (2011). Detection and characterization of Babesia species in Ixodes ticks in Estonia. Vector Borne Zoonotic Dis., 11, 923-928.
13. Nakajima R., Tsuji M., Oda K., Zamoto-Niikura A., Wei Q., Kawabuchi-Kurata T., Nishida A., Ishihara C. (2009). Babesia microti-group parasites compared phylogenetically by complete sequencing of the CCTeta gene in 36 isolates. J. Vet. Med. Sci., 71, 55-68.
14. Welc-Falçciak R., Bajer A., Paziewska-Harris A., Baumann-Popczyk A., Sinski E. (2012). Diversity of Babesia in Ixodes ricinus ticks in Poland. Adv. Med. Sci., 57, 364-369.
15. Zamoto A., Tsuji M., Wei Q., Cho S.H., Shin E.H., Kim T.S., Leonova G.N., Hagiwara K., Asakawa M., Kariwa H., Takashima I., Ishihara C. (2004). Epizootiologic survey for Babesia microti among small. J. Vet. Med. Sci., 66, 785-792.
Review
For citations:
Rar V.A., Yakimenko V.V., Makenov M.T., Tikunov A.Y., Epikhina T.I., Tantsev A.K., Bobrova O.A., Tikunova N.V. Babesia infection of small mammals from southern taiga of Omsk region. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(1):59-64. (In Russ.) https://doi.org/10.12737/21488
Views:
734
Email this article 
