Бородулина Елена Александровна – доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой фтизиатрии и пульмонологии
443099, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Elena A. Borodulina – Dr. Sc. (Med.), Professor, Head of the Department of Phthisiology and Pulmonology
Chapaevskaya str. 89, Samara 443099
Васнева Жанна Петровна – кандидат биологических наук, врач-лаборант
443099, г. Самара, ул. Мяги, 7А
Zhanna P. Vasneva – Cand. Sc. (Biol.), Laboratory Assistant
Myagi str. 7A, Samara 443093
Вдоушкина Елизавета Сергеевна – кандидат медицинских наук, доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии
443099, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Elizaveta S. Vdoushkina – Cand. Sc. (Med.), Associate Professor at the Department of Phthisiology and Pulmonology
Chapaevskaya str. 89, Samara 443099
Бородулин Борис Евгеньевич – доктор медицинских наук, профессор кафедры фтизиатрии и пульмонологии
443099, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Boris E. Borodulin – Dr. Sc. (Med.), Professor at the Department of Phthisiology and Pulmonology
Chapaevskaya str. 89, Samara 443099
Поваляева Людмила Викторовна – кандидат медицинских наук, доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии
443099, г. Самара, ул. Чапаевская, 89
Ljudmila V. Povalyaeva – Cand. Sc. (Med.), Associate Professor at the Department of Phthisiology and Pulmonology
Chapaevskaya str. 89, Samara 443099
Обоснование. Успех противодействия организма человека инфекциям в значительной мере зависит от иммунной системы. Механизмы реагирования клеточного иммунитета на вирус SARS-CoV-2 ещё точно не определены и изучаются.
Цель работы. Исследование особенностей показателей клеточного звена иммунитета у пациентов с поражением лёгких до 30 % при COVID-19.
Материал и методы. Обследовано 73 человека в период пандемии 2020– 2021 гг. Группу изучения составил 31 пациент с поражением лёгких до 30 % при COVID-19, группу сравнения – 42 человека, не инфицированных SARS-CoV-2. Общий клинический анализ крови проводили с использованием гематологического анализатора Medonic M20 (Boule Medical, Швеция), уровень субпопуляций лимфоцитов определяли с использованием цитометра FACS Calibur (BD, США) и меченных ФИТЦ и фикоэритрином моноклональных антител (Сорбент, Россия). Различия считались статистически значимыми при р < 0,05.
Результаты. У пациентов с COVID-19 при поражении лёгких по данным компьютерной томографии (КТ) ≤ 30 % до начала лечения отмечается перестройка в соотношении субпопуляций лимфоцитов в 67,7 % случаев. Лимфопения (< 1,1 × 109 кл./л) выявлена у 34,4 % пациентов: снижение абсолютного содержания CD3+-лимфоцитов – на 30,8 %, CD3+CD4+ – на 35 %, CD3+CD8+ – на 6,7 % (р < 0,05), CD16+CD56+ натуральных киллеров (НК) – на 29,4 % (р = 0,009). Уровень CD95+-лимфоцитов при COVID-19 в 3,2 раза выше, чем у здоровых лиц. Повышенные уровни HLA-DR+- (> 20 %) и CD3+ HLA-DR+- лимфоцитов (> 6 %) регистрируются у 60 % и 86,7 % пациентов соответственно. Повышенный уровень CD19+ В-лимфоцитов (> 17 %) при COVID-19 бывает в 2,6 раза чаще, чем у здоровых лиц. Выявлены корреляционные зависимости содержания НК-клеток с широким спектром субпопуляций Т-лимфоцитов.
Заключение. Показатели клеточного иммунитета при COVID-19 имеют ряд характерных особенностей, которые могут служить предиктором прогрессирования тяжести заболевания.
Background. The stability of human organism for different kind of infection, including SARS-CoV-2 is significantly defined by the immune system. The mechanisms of the cellular immunity to the SARS-CoV-2 are not exactly defined and are under study.
The aim. To study the features of cell immunity parameters in patients with lung damage up to 30 % in COVID-19.
Material and methods. 73 people were examined during the 2020–2021 pandemic. The study group consisted of 31 patients with lung damage up to 30 % with COVID-19, the comparison group consisted of 42 people not infected with SARS-CoV-2. A complete clinical blood count was carried out using a Medonic M20 hematological analyzer (Boule Medical, Sweden), the level of lymphocyte subpopulations was determined using a FACS Calibur cytometer (BD, USA) and FITC- and phycoerythrin-labeled monoclonal antibodies (Sorbent, Russia). Differences were considered statistically significant at p < 0.05.
Results. Patients with COVID-19 with lung damage according to computed tomography (CT) ≤ 30 % before the treatment had a restructuring in the ratio of lymphocyte subpopulations in 67.7 % of cases. Lymphopenia (< 1.1 × 109 cells/l) was detected in 34.4 % of patients: a decrease in the absolute count of CD3+ lymphocytes by 30.8 %, CD3+CD4+ – by 35 %, CD3+CD8+ – by 6.7 % (p < 0.05), CD16+CD56+ natural killer (NK) cells – by 29.4 % (p = 0.009). The level of CD95+ lymphocytes in COVID-19 is 3.2 times higher than in healthy individuals. Elevated levels of HLA-DR+- (> 20 %) and CD3+ HLADR+ lymphocytes (> 6 %) are recorded in 60 % and 86.7 % of patients, respectively. Elevated levels of CD19+ B lymphocytes (> 17 %) in COVID-19 are 2.6 times more common than in healthy individuals. Correlation dependences of the count of NK cells with a wide range of T lymphocyte subpopulations were revealed.
Conclusion. Cellular immunity indicators in COVID-19 have a number of features that can serve as predictors of the progression of the severity of the disease.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.